Возбудителями хламидиоза свиней являются хламидии видов: Chlamydophila abortus, Chlamydophila pecorum, Chlamydia suis, при заражении от птиц - Chlamydophila psittaci. Кроме того, у свиней был выделен возбудитель Chlamydia trachomatis, но, видимо, это была ошибка, и на самом деле был выделен очень близкий к нему вид Chlamydia suis. В старой классификации Chlamydia trachomatis, как полагали, состояла из трех биоваров, основанных на тканевом тропизме или хозяинной специфичности. Это были: биовар, вызывающий венерическую лимфогранулёму у людей; TRIC-биовар, поражающий глаза и органы размножения у людей (серовары D и К) и биовар, вызывающий пневмонию у мышей (инфекция мышей, которая была давно известна; теперь классифицируемая как Chlamydia muridarum). Однако, в 1994 году изолят хламидий, названный S45, был обнаружен у клинически здоровых свиней. Он сильно отличался от других хламидий (представителей рода Chlamydophila) вызывающих инфекции у свиней, поскольку он имел характеристики, напоминающие возбудителя Chlamydia trachomatis (Storz и другие., 1994). Этот изолят S45 был чувствителен к сульфадиазину, так же как и Chlamydia trachomatis в большинстве случаев. Результаты изучения гена, кодирующего главный внешний мембранный белок показали, что этот изолят был ближе к мышиному биовару Chlamydia trachomatis (теперь Chlamydia muridarum) чем к биоварам Chlamydia trachomatis, обычно поражающих людей. Когда этот изолят ещё считался отдельным свиным биоваром Chlamydia trachomatis, оказалось вероятным, что инфекции с Э45-подобными организмами у свиней могут быть относительно широко распространены и диагностированы (Storz и другие., 1994). Имевшие различия в хозяинной специфичности и в последовательности гена, кодирующего 16s р-РНК, эти штаммы теперь официально переклассифицированы как Chlamydia suis (Эверетт и другие., 1999). В экспериментальных инфекциях у свиней-гнотобиотов, штаммы Chlamydia suis вызывали бессимптомные кишечные инфекции у поросят-отъёмышей, с поражением кишечника, но без диареи (Rogers и Andersen, 2000). Кишечные хламидийные инфекции были также связаны с развитием синдрома истощения у поросят-отъёмышей (Carrasco и другие., 2000). Предположение Storz и других., 1994, что Chlamydia suis может быть обычной инфекцией у свиней, было подтверждено в основных эпизоотических исследованиях. Легкие и кишечник от 49 свиней с болезнями органов дыхания и шейки матки от 205 свиноматок с репродуктивными расстройствами были исследованы на хламидийную инфекцию с помощью полимеразной цепной реакции, обнаруживающей фрагменты генов отр1 или отр2 гены. В результате проведения ПЦР были получены специфические фрагменты ДНК возбудителя Chlamydia suis у 49.0 % свиней с поражением органов дыхания и у 60.0 % свиней с репродуктивными расстройствами, так же как и в органах дыхания у 24.5 % здоровых свиней, но в 0 % случаев в органах размножения способных к размножению с ней. Исследования ДНК-гибридизации на образцах свиных лёгких и кишечника, показали высокую распространенность смешанных инфекций Chlamydophila abortus и Chlamydia suis, подтвержденных полиморфизмом длины рестрикционных фрагментов и последовательностью нуклеотидов. В образцах органов размножения бесплодных свиней, большинство хламидий (81.3 %) было идентифицировано как Chlamydophila abortus. Последовательность нуклеотида в гене, кодирующем главный внешний мембранный белок у Chlamydia suis показала существенную разнородность по сравнению с штаммом Chlamydia suis S45 (максимальное соответствие 82.7 %) [Hoelzle и другие., 2000].

Учитывая близкое родство Chlamydia suis к Chlamydia trachomatis, тревожно, что в Штате Небраска появились устойчивые к тетрациклинам штаммы Chlamydia suis [Lennart и другие., 2001]. Устойчивые штаммы могли расти при концентрации тетрациклина до 4 мкг/мл, тогда как чувствительные штаммы Chlamydia suis и большинство человеческих штаммов Chlamydia trachomatis чувствительны к концентрации тетрациклина приблизительно 0.1 мкг/мл. И Chlamydia suis и Chlamydia trachomatis были способны к poSv^y вместе в той же концентрации.

Chlamydia suis-модель, аналогичная половой инфекции, вызванной Chlamydia trachomatis.

Предыдущие исследования показали, что женские половые гормоны влияют на хламидийную инфекцию и в естественных условиях и в пробирке. Учитывая меньшую пригодность тканей половых органов человека для исследования, эпителиальные клетки половых органов свиноматок были описаны как уместная альтернативная клеточная модель [Гусева и другие., 2003]. Выбракованных половозрелых свиноматок предпочтительнее использовать для этой цели потому, что: а) есть сходство синдромов болезни, передающейся половым путём и осложнений у свиней и людей, сопоставимое с болезнью у людей; Ь) близкое сходство возбудителей Chlamydia suis и Chlamydia trachomatis (серовар D, выделенный от людей), и с) сходство физиологии эпите-лиальных клеток и средней длины овариального цикла у свиней с таковыми у людей. Эпителиальные клетки шейки матки, матки, и рогов матки были выделены и культивировались в пробирке в среде Дюльбекко вместе с внешним влиянием и без внешнего влияния полового гормона, и были заражены вирулентным возбудителем Chlamydia suis S-45. Распределение хламидий- ных телец-включений в свиных эпителиальных клетках было неравномерным и зависело от локализации в половом тракте и гормонального статуса. Под воздействием эстрогенов эпителиальные клетки свиней были более восприимчивы к хламидийной инфекции, чем клетки под воздействием прогестерона. Кроме того, дифференцированные эпителиальные клетки протоков желёз были более восприимчивы к инфекции, чем ме- цее дифференцированные железистые эпителиальные клетки. Для последнего типа клеток была характерна персистенция хламидийной инфекции. Свежевыделенные первичные свиные эпителиальные клетки, замороженные при минус 80 градусах Цельсия с 10%-ым диметилсульфоксидом (димексидом) впоследствии восстанавливались и формировали характерные поляризованные монослои через 3 - 5 дней.

Эти исследования наводят на мысль, что Chlamydia suis - вероятно обычный и широко распространенный микроорганизм у свиней, хотя эта информация очень ограничена. Вероятность смешанных инфекций мешает приписывать причину патологии только возбудителю Chlamydia suis. Однако экспериментальное перораль- ное заражение свиней указывает, что этот микроорганизм - вероятно играет существенную роль в возникновении болезней животных. Появление устойчивых к тетрациклинам штаммов Chlamydia suis в штате Небраска указывает, что, учитывая широко распространенное использование тетрациклинов для лечения половых инфекций, вызванных Chlamydia trachomatis, у человека, нельзя быть уверенным в чувствительности последнего микроорганизма к этим антибиотикам. Важно установить генетическое и биохимическое основание устойчивости возбудителя Chlamydia suis к тетрациклинам. Учитывая недостаток тканей половых органов человека для исследований во многих странах, наблюдение за поражением возбудителем Chlamydia suis эпителия по-ловых органов свиней может использоваться, поскольку моделирование воздействия половых гормонов на хламидийные инфекции имеет большое значение].

Эпизоотология. Основной источник возбудителя - больные животные (свиноматки, хряки, поросята) и хламидионосители. Хламидии выделяются из организма больных и носителей с разными секретами, экскретами, плацентами и маточными выделениями абортировавших свиноматок, со спермой хряков, абортированными плодами. Инфекция протекает энзоотически. Заражение происходит, в основном, алиментарным путём. Так же заражение может происходить при прямом контакте, внутриутробно и половым путём. На неблагополучных фермах широко распространена латентная инфекция. Хламидиоз возникает спорадически во все сезоны года.

Патогенез. У заражённых животных хламидии можно обнаружить во всех тканях и органах. У взрослых животных возбудитель, в основном, поражает репродуктивные органы. Хламидиоз часто передаётся трансплацентарным путём. Хламидии вызывают в тканях воспаление, что приводит к различным деструктивным изменениям. Под действием продуктов обмена веществ хламидий стенка кровеносных сосудов становится проницаемой, это приводит к экссудации и инфильтрации. При этом наблюдается выпот фибрина и множественные кровоизлияния.

Клинические признаки. Инкубационный период от 15 дней до нескольких недель. Болезнь может протекать латентно без признаков проявления и в острой форме. Болезнь регистрируют у свиней всех возрастных групп, клинические признаки зависят от пола и возраста животных. У свиноматок наблюдают рождение мёртвого и слабого приплода, аборты. В длительно неблагополучных хозяйствах наблюдают рождение мёртвых поросят. У хряков болезнь проявляется уретритами, артритами, орхитами, кровотечениями из уретры, баланопоститами, наличием крови в сперме, серозно-фибринозными или слипчивыми периорхитами, простатитами, куперитами, семенными везикулитами, фимозом, парафимозом, иногда пневмонией, анорексией, поносом, истощением. У поросят наблюдают пневмонии, конъюнктивиты, артриты, поносы, нервные явления, очаговые некротические поражения кожи, чешуйчатые дерматиты, некроз и отпадение хвоста и ушей, серозно-фибринозные перикардиты,плевриты и полисерозиты.

Диагностика. Для диагностики надо использовать все доступные методы: клинические, эпизоотологические, патологоанатомические данные и данные лабораторных исследований. Данные серологических исследований недостаточно показательны. В настоящее время с помощью полимеразной цепной реакции можно установить виды хламидий и поставить диагноз на основании обнаружения небольшого количества хламидий. Аллергическая диагностика разработана недостаточно. Хламидиоз следует дифференцировать от бруцеллёза, лептоспироза, листериоза, микоплазмоза, гемофилёзного полисерозита и инфекции, вызванной возбудителем Actinobaculum suis.
Vf.

Лечение. Для лечения можно использовать тетрациклины, макролиды, левомицетин, рифампицин и фторхинолоны, а также клиндамицин.

Профилактика. Для специфической профилактики хламидиоза свиней можно использовать вакцины: 1) вакцину против хламидиоза свиней культуральную инактивированную (ООО Блиц), 2) вакцину против хламидиоза животных ВИЭВ.

Вакцину против хламидиоза свиней культуральную инактивированную применяют 2 раза в год. Вакцину против хламидиоза животных ВИЭВ применяют в дозе: свиньи до 6 месяцев - 1 мл подкожно, свиньи старше 6 месяцев - 2 мл подкожно.


Література:

  1. Ford RB. Role of infectious agents in respiratory disease. Vet Clin North Am (Small Anim Pract) 1993;23:17-35.
  2. Ford RB, Levy JK. Infectious diseases of the respiratory tract. In: Sherding RG, ed. The cat: diseases and clinical management. New York: Churchill Livingstone, 1994:489-500.
  3. Gaskell RM. Upper respiratory disease in the cat (including chlamydia): control and prevention. Feline Pract 1993;21(2):29-34.
  4. Greene CE. Chlamydial infections. In: Greene CE, ed. Infectious diseases of the dog and cat. Philadelphia: WB Saunders, 1990:443-449.
  5. Hoover EA. Viral respiratory diseases and chlamydiosis. In: Holzworth J, ed. Diseases of the cat. Philadelphia: WB Saunders, 1987:214-237.
  6. Carrasco, L., Seales, J., Bautista, M.J., Gomez-Villamandos, J.C., Rosell, C., Ruiz-Villamor, E. and Sierra, M.A., (2000). Intestinal chlamydial infection concurrent with post-weaning multi-systemic wasting syndrome in pigs. Vet. Rec. 146: 21 -
    23.
  7. Everett, K.D., Bush, R. M. and Andersen, A. A., 1999. Emended description of the order Chlamydiales, proposal of
    Parachlamydiaceae fam. Nov and Simkania fam.nov., each containing one monotypic genus, revised taxonomy of the family Chlamydiaceae, including a new genus and fire new species, and standards for the identification of organisms. Int. J. Syst. Bacteriol. 49: 415-440.
  8. Guseva, N. V., Knight, S. Т., Whittimore, J. D. & Wyrick, P. B. (2003). Primary cultures of female swine genital epithelial
    cells in vitro: a new approach for the study of hormonal modulation of Chlamydia infection. Infection and Immunity 71, 700 - 710.
  9. Hoelzle, L. E., Steinhausen, G. & Wittenbrink, М. M. (2000). PCR-based detection of chlamydial infection in swine and
    subsequent PCR-coupled genotyping of chlamydial ompl-gene amplicons by DNA-hybridization, RFLP-analysis, and nucleotide sequence analysis. Epidemiol Infect 125, 427 - 439.
  10. Lenart J, Andersen AA, Rockey DD. (2001). Growth and development of tetracycline-resistant Chlamydia suis. Antimicrobial Agents and Chemotherapy 2001 Aug;45(8):2198-203.
  11. Rogers, D.G. and Andersen, A.A., (2000). Intestinal lesions caused by a strain of Chlamydia suis in weanling pigs infected at 21 days of age. J. Vet. Diagn. Invest. 12: 233-239.

Автор: В.Г. Ощепков, к.в.н., Омский ветеринарный институт, Россия

Статистика

Вверх

© Ветеринария 2016